1 UNIVERSIDAD PRIVADA ANTENOR ORREGO FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS PROGRAMA DE ESTUDIO DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA TESIS PARA OBTENER EL TÍTULO PROFESIONAL DE: MEDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA ___________________________________________________________________ Identificación de Salmonella spp. en heces de palomas en la urbanización Luis Albretch, Trujillo ___________________________________________________________________ Área de Investigación: Salud Pública Autor: Flores Ganoza, María Eduarda Jurado Evaluador: Presidente: Mendoza Mendocilla, Roxana Marisol Secretario: Guerrero Díaz, Vilma Patricia Vocal: Castro Haro, Glenda Melissa Asesor: Huamán Dávila, Angélica María Código Orcid: https://orcid.org/0000-0003-3584-2294 Trujillo – Perú 2024 Fecha de sustentación: 2024/12/10 https://orcid.org/0000-0003-3584-2294 ii iii DECLARACIÓN DE ORIGINALIDAD Yo, Angélica Huamán Dávila, docente del Programa de Estudio Medicina Veterinaria y Zootecnia, de la Universidad Privada Antenor Orrego, asesora de la tesis de investigación titulada Identificación de Salmonella spp. en heces de palomas en la Urbanización Luis Albrecth, Trujillo, 2024, autora María Eduarda Flores Ganoza, dejo constancia de lo siguiente: • El mencionado documento tiene un índice de puntuación de similitud de 3%. Así lo consigna el reporte de similitud emitido por el software TURNITIN el 18 de noviembre del 2024 • He revisado con detalle dicho reporte y la tesis y no se advierten indicios de plagio. • Las citas a otros autores y sus respectivas referencias cumplen con las normas establecidas por la Universidad. Trujillo, 18 de noviembre de 2024 Asesora: Angélica María Huamán Dávila Autor: María Eduarda Flores Ganoza DNI: 45228377 DNI: 72021773 ORCID: Firma: Firma: iv La presente tesis ha sido revisada y aprobada por el siguiente jurado: _________________________________ Mblga. MsC. Roxana Mendoza Mendocilla PRESIDENTE ____________________________________ MV. Mg. Vilma Patricia Guerrero Díaz SECRETARIA _______________________________________ MVZ. Mg. Glenda Melissa Castro Haro VOCAL __________________________________ MVZ. MsC. Angélica María Huamán Dávila ASESORA v DEDICATORIA Dedico mi tesis principalmente a mi padre, Eduardo Flores, que le hubiera gustado verme culminar la carrera, pero sé que está muy orgulloso de mi, aunque no esté aquí conmigo; a mi madre, Sandra Ganoza, que, aunque nunca le gustaron los animales, siempre se preocupó por mí y que pudiera culminar la carrera. A mis tías Karla y Alexandra Sarmiento que siempre que necesité ayuda estaban ahí para aconsejarme. Quiero dedicarla también a la veterinaria que me hizo querer estudiar la carrera cuando era pequeña y seguir su ejemplo. vi AGRADECIMIENTO Agradezco a mi papá por dejarme estudiar lo que quería sin ponerme peros y siempre espero lo mejor para mí, y se lo demostré siempre que pude, que esta era la carrera para mí y que la culminaría; a mi mamá, por el apoyo incondicional a pesar de que su amor odio por los animales; son la razón por la que a pesar de que muchas veces sentía que la carrera me consumía pude seguir adelante con su amor y paciencia, de que cualquier problema se puede resolver, solo se necesita tomarlo con calma, por todas las enseñanzas que me inculcaron desde pequeña me hicieron la persona que soy ahora. Los amo mucho papi y mami. A mis tías Karla y Alexandra, que siempre estuvieron conmigo en muchos momentos indispensables en los que necesitaba desconectar un momento, viendo pelis o series; o momentos críticos como no saber hacer algo con la tesis, estaban ahí para explicarme cómo hacerlo, a buscar información o corregir cosas; les estoy muy agradecida por todo su apoyo y las amo un montón. A mi asesora, la Dra. Angélica Huamán, muchas gracias por su paciencia y dedicación, que, aunque la tesis no era de su especialidad, siempre estuvo ahí para ayudarme y aconsejarme en todo momento, con todas la recomendaciones y enseñanzas que compartimos no solo en la tesis, si no en la carrera en general, me fueron de mucha ayuda y me guiaron muy bien para llegar hasta aquí. Al Dr. Christian Campos, por ayudarme en la parte práctica de la tesis; me recordó y enseñó como hacer muchas cosas en el laboratorio, su forma de explicar hizo que sea más fácil realizarla; a la Dra. Fátima, por ayudarme en el laboratorio siempre que lo necesitaba y hacer que el laboratorio siempre esté alegre. vii ÍNDICE Pag. DEDICATORIA .......................................................................................................................................... v AGRADECIMIENTO ................................................................................................................................. vi I. INTRODUCCIÓN .............................................................................................................................. 1 II. REVISIÓN DE BIBLIOGRAFÍA ........................................................................................................ 3 2.1. Generalidades de las palomas ......................................................................................................... 3 2.2. Importancia de las palomas en la Salud Pública ........................................................................... 3 2.3. Salmonelosis ....................................................................................................................................... 4 2.3.1. Generalidades ........................................................................................................................... 4 2.3.2. Formas de contagio .................................................................................................................. 5 2.3.3. Enfermedad en el humano ...................................................................................................... 5 2.4. Métodos diagnósticos ........................................................................................................................ 6 2.4.1. Diagnóstico convencional: ....................................................................................................... 6 2.4.2. Diagnóstico molecular .............................................................................................................. 7 III. MATERIALES Y MÉTODOS ............................................................................................................ 9 3.1. Lugar de Investigación ....................................................................................................................... 9 3.2. Tamaño de la muestra: ...................................................................................................................... 9 3.3. Técnica de muestreo ........................................................................................................................ 10 3.4. Variable dependiente: ...................................................................................................................... 10 3.5. Procedimiento de estudio: ............................................................................................................... 11 3.5.1. Técnica ..................................................................................................................................... 11 3.6. Análisis de datos ............................................................................................................................... 11 IV. RESULTADOS ............................................................................................................................... 12 V. DISCUSIÓN .................................................................................................................................... 14 VI. CONCLUSIONES ........................................................................................................................... 17 VIII. BIBLIOGRAFÍA ............................................................................................................................... 19 viii ÍNDICE DE CUADROS Pág. Cuadro 1. Prevalencia de bacterias identificadas en muestras de heces de palomas en la Urb. Albrecht, Trujillo 13 Cuadro 2. Prevalencia de bacterias identificadas en muestras de heces de palomas por zonas de la Urb. Albrecht, Trujillo 14 ix RESUMEN El objetivo de la presente investigación fue determinar la presencia de Salmonella spp. en heces de palomas en los diferentes sectores de la urbanización Luis Albretch ubicada en la ciudad de Trujillo; la muestra se obtuvo de acuerdo a la fórmula de cálculo de muestra por una proporción de una población infinita, resultando un total de 65 muestras, las cuales se tomaron mediante hisopado cloacal. Se aplicaron los métodos de enriquecimiento selectivo, subcultivos en agar Salmonella-Shigella y Mac Conkey, e identificación bioquímica. No se evidenció el crecimiento de Salmonella spp., sin embargo, se identificaron cepas de Escherichia coli y Klebsiella spp. Además, la zona con mayor prevalencia de Escherichia coli fue la zona 5 de la Urbanización Luis Albrecht, Trujillo; y Klebsiella spp. sólo se halló en la zona 1. Se concluye que en las muestras analizadas no se evidenciaron cepas de Salmonella spp. Palabra clave: Salmonella spp., palomas, muestra, análisis microbiológico, hisopado cloacal. x ABSTRACT The objective of this research was to determine the presence of Salmonella spp. in pigeon feces in different sectors of the Luis Albrecht urbanization located in the city of Trujillo. The sample was obtained according to the sample size calculation formula for an infinite population proportion, resulting in a total of 65 samples, which were collected through cloacal swabbing. Selective enrichment methods were applied, followed by subculturing on Salmonella-Shigella and MacConkey agar, and biochemical identification. No growth of Salmonella spp. was observed; however, strains of Escherichia coli and Klebsiella spp. were identified. Additionally, the area with the highest prevalence of Escherichia coli was zone 5 of the Luis Albrecht Urbanization, Trujillo; and Klebsiella spp. was found only in zone 1. It is concluded that no strains of Salmonella spp. were found in the samples analyzed. Keywords: Salmonella spp., pigeons, sample, microbiological analysis, cloacal swab. 1 I. INTRODUCCIÓN Las diversas razas de paloma que encontramos hoy en día, ya sean domésticas o silvestres, tienen como antecesor a Paloma bravia, especie importada a la zona norte de los Alpes por los romanos hace aproximadamente 4 000 años. La Segunda Guerra Mundial trajo un aumento en la población de las palomas en diversas ciudades de Europa (Haag-Wackernagel, 2009). Según Haag- Wackernagel (2004), en la actualidad hay una paloma por cada veinte personas que viven en una gran ciudad, ya que hay una extensa variedad de alimentos debido al bajo costo de estos, causando un bienestar poblacional y una gran cantidad de derroche que ayudó a que las palomas pudieran sobrevivir. Este mismo panorama se observa en las principales ciudades de nuestro país. Por otro lado, la zoonosis que se define como enfermedades infecciosas que proviene de los animales que se transmiten y causan efectos a los seres humanos, son originados por agentes que pueden llegar a causar alguna infección como los hongos, protozoarios, clamidias, bacterias o virus. La susceptibilidad de cada persona puede variar según la edad, el estado de salud, el estado de su sistema inmune y si se establece un tratamiento adecuado. Las diversas habilidades de los microorganismos para infectar a una persona varían de acuerdo a su virulencia, la cantidad a la cual la persona sea expuesta, así como la ruta de infección (Gaski et al., 2001). Una gran cantidad de enfermedades transmisibles hacia el hombre por parte de las palomas son zoonóticas (Waber, 1997 citado por Cerda et al., 2007), reportan más de 30 enfermedades en las palomas, teniendo en cuenta que esto afecta a la salud pública, las más importantes serían salmonelosis, criptococosis, listeriosis, aspergilosis, estafilococosis, y que su trasmisión es más peligrosa ya que es a través de las excretas. 2 En la ciudad de Trujillo, con una población de 1 882 405 y una actividad agrícola y pecuaria en expansión, hace propicio el crecimiento en la población de palomas; considerando que estas aves viven de manera libre, se reproducen sin control y las personas no pueden controlar su crianza en términos de manejo sanitario, durante su desplazamiento por la ciudad y principalmente en algunos lugares donde son alimentadas por la población, como en plazas públicas, esparcen sus excretas en todo lugar, pudiendo estar contaminando los ambientes y representando un peligro de salud pública. Es por ello, que el objetivo de la presente investigación es la identificación de Salmonella spp. en heces de palomas en la urbanización Luis Albrecth del distrito de Trujillo. 3 II. REVISIÓN DE BIBLIOGRAFÍA 2.1. Generalidades de las palomas La "paloma doméstica" (Columba livia) es una especie de paloma que ha sido domesticada y criada por el ser humano durante miles de años. Es la misma especie que se conoce comúnmente como paloma mensajera o paloma de ciudad. Las palomas domésticas se han adaptado a una variedad de entornos y pueden encontrarse en ciudades de todo el mundo, donde a menudo se les conoce como palomas urbanas o "palomas de calle" (Romero, 2022). Estas palomas tienen una gran variedad de colores y patrones debido a la selección y cría por parte de los humanos. A pesar de su domesticación, conservan muchas de las características de sus ancestros salvajes, como la capacidad de volar largas distancias y su habilidad para encontrar el camino a casa, lo que ha sido aprovechado en la mensajería y en competiciones de palomas mensajeras (Flowers et al., 1988). En su hábitat natural, la paloma doméstica es descendiente de la paloma bravía (Columba livia), que es originaria de Europa, el Norte de África y Asia Occidental. La clasificación taxonómica de las palomas, se encuentran en el Reino- Animal, seguido de Filo-Cordata, su clase es aves, del orden Columbiformes, de la Familia Colimbidae, y dependiendo del género pueden ser Columba, Zenaida y Columbina (Miranda, 2006). 2.2. Importancia de las palomas en la Salud Pública La Salud Pública tiene como estudio la salud humana, animal y ambiental; y esta es considera como la ciencia que ayuda a prevenir y controlar las enfermedades (mayormente zoonóticas), fomentar la salud física y mental, 4 prolongar la vida y poder afrontar los problemas de salud, la discapacidad y mantener un nivel de vida adecuado (Ministerio de Salud-MINSA, 2018). La salud pública es una problemática en los diferentes países de Américas que incluye un desarrollo limitado de investigaciones, que causa una sanidad mal abordada, mala gestión de desechos, diversas plagas (cucarachas, ratas, palomas, etc.), propagación de enfermedades infecciosas, entre otros (Perdomo, 2017). La interacción de las palomas con el ser humano es un beneficio, no obstante, los cambios que genera la evolución humana han generado retos para su supervivencia y adaptarse a los nuevos lugares urbanos, no es solo un peligro para la salud, sino también para las infraestructuras y los paisajes. Diversas evidencias científicas determinan su gran aportación a la transmisión y reservorio de diversos patógenos de animales y de humanos, pudiendo afectar a otras aves y perjudicar su crianza (Méndez et al., 2013). 2.3. Salmonelosis 2.3.1. Generalidades La salmonelosis es una infección causada por bacterias del género Salmonella y presentan mayor resistencia al ambiente ya que tiene una fácil adaptación y los recursos necesarios para su supervivencia son pocos. Cuenta con múltiples serovariedades que pueden afectar a diversas especies de animales y al humano. La importancia de estudiar a esta bacteria, es porque afecta a más de una especie y puede llegar a ser perjudicial (Cangui y Delgado, 2019; Romero, 2022). Esta infección puede llegar a causar debilidad, deshidratación y muerte a animales muy jóvenes y a senescentes porque tienen el sistema inmune poco desarrollado o en decadencia, respectivamente (Gaski et al., 2001). 5 2.3.2. Formas de contagio Las palomas, como muchas otras aves, pueden ser portadoras de esta bacteria sin presentar síntomas evidentes, lo que las convierte en un posible reservorio de la bacteria (Cangui y Delgado, 2021). El contagio de Salmonella de palomas a humanos puede ocurrir a través de varias formas, si un ser humano entra en contacto con las heces contaminadas, ya sea tomándolas directamente o a través de superficies contaminadas (como muebles, equipos, o herramientas que hayan estado en contacto con las heces), puede adquirir la infección por la vía digestiva. Esto puede ocurrir, por ejemplo, al limpiar áreas donde hay excrementos de palomas sin usar equipo de protección adecuado (Romero, 2022). Las superficies, como muebles, equipos, o incluso el suelo, que están en contacto con las heces de las palomas, pueden actuar como vehículos de transmisión. Si una persona toca estas superficies y luego se lleva las manos a la boca sin haberse lavado las manos adecuadamente, puede infectarse (Miranda, 2006). 2.3.3. Enfermedad en el humano La generación de signos y síntomas depende también de la inmunidad del huésped y se presenta luego del período de incubación que dura de 12 a 21 días. Cuando el patógeno ingresa al sistema gastrointestinal existen diversos mecanismos que protegen al humano como por ejemplo, en el estómago, el patógeno es inactivado por el jugo gástrico y en el intestino delgado aumenta el peristaltismo para que el microorganismo no se pueda fijar en la mucosa, se produce IgA secretora para la generación de más anticuerpos, hay células que pueden fagocitar al patógeno y la acción de la microflora normal que impide que aumente el número de bacterias para que no exista escasez de alimentos. Sin embargo, al encontrarse dentro de los alimentos y por el consumo de medicamentos antiácidos (pH alcalino) beneficia a la supervivencia del patógeno (Romero, 2011). 6 2.4. Métodos diagnósticos 2.4.1. Diagnóstico convencional: Salmonella spp. se puede aislar más fácilmente de muestras de heces, pero en casos de fiebres entéricas, se recomienda un hemocultivo durante las dos primeras semanas para una detección más efectiva del microorganismo (Koneman et al., 2001). La microbiología convencional se emplea para el aislamiento, identificación bioquímica y caracterización antigénica de Salmonella spp. Esto implica fases como preenriquecimiento, enriquecimiento selectivo, aislamiento en medios sólidos, selección de colonias sospechosas y serología (Andrade et al., 2010). En el aislamiento en medios sólidos, se utilizan varios agares recomendados por el Ministerio de Agricultura, Ganadería y Abastecimiento, como el agar Hektoen, agar Rambach, MacConkey, verde brillante suplementado con novabiocina y XLT4 (xilosa lisina tergitol 4). Estos agares no solo son selectivos, sino también diferenciales, permitiendo el crecimiento de colonias con diferentes características bacterianas (Andrade et al., 2010). Durante la detección, las pruebas bioquímicas observan cambios en el pH y color de los medios de cultivo con el crecimiento bacteriano. Por ejemplo, el agar Sulfuro - Indol - Movilidad (SIM) determina la motilidad bacteriana, siendo positivo para Salmonella spp. El medio Triple Sugar Iron Agar (TSI) muestra producción de gas y alcalinidad en presencia de Salmonella spp., mientras que el agar Agar Lisina- Hierro (LIA) indica presencia alcalina y, posiblemente, gas de ácido sulfhídrico (H2S). La prueba de urea muestra una reacción negativa para la presencia de ureasa de Salmonella spp. La interpretación de estos resultados se realiza después de 24 horas de incubación a 37°C. Las colonias que muestran resultados preliminares compatibles con Salmonella spp. se someten a caracterización bioquímica definitiva (Andrade et al., 2010). 7 La metodología tradicional para la detección de Salmonella spp. requiere al menos cuatro días para un resultado negativo, lo cual es lento para la industria alimentaria. Por eso, se recurre frecuentemente a métodos rápidos como el ensayo por inmunoabsorción ligado a enzimas (ELISA), aunque puede tener resultados inconsistentes con la microbiología convencional (Flowers et al., 1988). 2.4.2. Diagnóstico molecular El uso de métodos para identificar Salmonella spp. como la caracterización bioquímica, el serotipo, la susceptibilidad antimicrobiana y la serología, aunque altamente confiables, requiere de mucho tiempo (Aragon et al., 2005). Por otro lado, la técnica de reacción en cadena de la polimerasa (PCR) reduce significativamente el tiempo de identificación y detección de salmonelosis, de días a solo unas pocas horas, lo que beneficia tanto a los laboratorios clínicos como industriales, facilitando también la detección de organismos no cultivables convencionalmente (Andrade et al., 2010). La PCR, al ser muy específica, puede emplear tanto ácido- desoxirribonucleico (ADN) cromosómico como plasmídico, permitiendo así trazar el perfil genético de un organismo a partir de genes únicos conocidos de la especie (Cloeckaert et al., 2008). Esta técnica detecta una región única en la mayoría de las cepas de Salmonella, codificando proteínas importantes en la patogenicidad bacteriana y sin homología con otros microorganismos. Entre los cebadores utilizados, invA, IS200, hin, H-li, iagAB, spvR, viaB, mkfA, ompC y oriC destacan por su especificidad, como invA que identifica S. enterica y S. bongori (Andrade et al., 2010). La PCR, en comparación con las técnicas microbiológicas, evita falsos negativos y no depende de variaciones fenotípicas, según Andrade et al. (2010). El gen invA, altamente conservado en Salmonella, es ampliamente utilizado debido a 8 su especificidad. Flores et al. (2001) y Andrade et al. (2010) demostraron la efectividad de cebadores derivados de invA en la detección de Salmonella. Además, la combinación de cebadores de invA e invB aumenta la especificidad de la PCR. La PCR demuestra ser más sensible que el aislamiento bacteriano, especialmente en infecciones latentes. También se ha utilizado con éxito en la detección de Salmonella en diversos productos, como carne, heces, tejidos y leche. Los genes ompC, SdfI, ViaB y Spy se han utilizado como dianas para la identificación de diferentes serotipos de Salmonella (Alvarez et al., 2004; Balakrishna et al., 2006). Sin embargo, la presencia de sustancias inhibidoras puede limitar la eficacia de la PCR en muestras alimentarias, clínicas y ambientales. Para superar este problema, se utilizan técnicas de extracción de ADN como el fenol-cloroformo, que proporcionan resultados satisfactorios incluso en presencia de inhibidores (Flores et al., 2001) III. MATERIALES Y MÉTODOS 3.1. Lugar de Investigación Las capturas de las aves y la toma de muestras se realizaron en la Urbanización Luis Albretch del distrito de Trujillo de la región de La Libertad. Los análisis microbiológicos de las muestras fueron ejecutados en el laboratorio de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Privada Antenor Orrego. 3.2. Tamaño de la muestra: Se determinó el número de muestras de heces de paloma incluidas en el estudio de acuerdo a la fórmula de cálculo de muestra por una proporción de una población infinita: 𝑛 = 𝑍𝛼 2 2 × 𝑝 × 𝑞 𝑒2 En donde: 𝑛: Muestra. 𝑍α/2: Índice de confianza (seguridad). 𝑝: Proporción esperada. 𝑞: Proporción no esperada. 𝑒: Error máximo permisible. Se aplicó la fórmula considerando una proporción de 36% por García (2016), con un índice de confianza del 90% y un error del 10%. 10 𝑛 = 𝑍𝛼 2 2 × 𝑝 × 𝑞 𝑒2 = (1.645)2 × 0.36 × 0.64 (0.1)2 = 0.6234 0.01 = 62.34 ≅ 63 Se recolectarán 63 muestras en total. 3.3. Técnica de muestreo Se realizó una técnica probabilística por muestreo estratificado, estableciendo el área de recolección de muestras en las principales áreas comunes de la urbanización Luis Albrecht (Zona 1, Zona 2, Zona 3, Zona 4 y Zona 5), como se muestra en la figura 1. Figura 1. Urbanización Luis Albrecht 3.4. Variable dependiente: Presencia de Salmonella spp. en las muestras analizadas. 11 3.5. Procedimiento de estudio: De forma aleatoria, se capturaron 65 palomas, con el uso de redes de niebla de una medida aproximada de 12 x 3 m colocadas de acuerdo a los puntos de la figura 1; sujetadas e inmovilizadas para la toma de muestras, mediante hisopado cloacal usando hisopo estéril, el cual fue rotado por 20 segundos, de manera suave. El hisopo con la muestra se colocó en el medio de transporte Stuart, y puestos en cooler con gel refrigerante a 4 °C para ser trasladados al laboratorio para su procesamiento. Las aves muestreadas fueron marcadas al cortar el extremo de una de las plumas axilares, posteriormente fueron liberadas (Salud, 2017, Espinoza y Morales, 2019). 3.5.1. Técnica El aislamiento de Salmonella spp. se inició con la inoculación del hisopo en caldo selenito cistina, medio que proporciona un enriquecimiento selectivo de la bacteria a partir de las heces, a una incubación de 37 °C por 24 horas. El crecimiento de las bacterias se evidenció por la presencia de turbidez. Se realizaron los subcultivos en agar Salmonella Shigella (SS) y en agar Mac Conkey, incubados a 37 °C por 24 horas. Se consideraron a las colonias Lactosa negativas y las que indicaban un centro negro (por la producción de sulfhídrilo) para la identificación bioquímica; y se utilizaron las pruebas de oxidasa, triple azúcar hierro (TSI), lisina hierro (LIA), sulfuro indol motilidad (SIM), citrato Simmons y caldo urea; incubados a 37 °C por 24 horas (López et al., 2016; Espinoza y Morales, 2019; Britania, 2021). 3.6. Análisis de datos Se realizó un análisis de frecuencia de los datos obtenidos IV. RESULTADOS El cuadro 1 indica que de los 65 hisopados, en 21 (32.31%) de ellos, se hallaron bacterias; 19 correspondientes a Escherichia coli (29.23%), y 2 (3.08%), a Klebsiella spp. No se evidenció crecimiento de Salmonella spp. a partir de los hisopados. Cuadro 1. Bacterias identificadas en muestras de heces de palomas en la Urb. Albrecht, Trujillo. Cultivo N° de muestras % Salmonella spp. 0 0 Escherichia coli 19 29.23 Klebsiella spp. 2 3.08 Negativos 44 67.69 Total 65 100 13 La zona con mayor cantidad de muestras positivas fue la 5 con seis muestras positivas a Escherichia coli, mientras que, la menor cantidad de muestras positivas fue la zona 1 con dos muestras, como se observa en el cuadro 2. Las cepas de Klebsiella spp. se encontraron únicamente en un lugar que fue la zona 1, con 2 muestras positivas (Cuadro 2). Cuadro 2. Bacterias identificadas en muestras de heces de palomas por zonas de la Urb. Albrecht, Trujillo Zona Bacteria N° de muestras % 1 Ninguna 9 69.23 E. coli 2 15.38 Klebsiella spp. 2 15.38 2 Ninguna 9 69.23 E. coli 4 30.77 3 Ninguna 9 69.23 E. coli 4 30.77 4 Ninguna 10 76.92 E. coli 3 23.08 5 Ninguna 7 53.85 E. coli 6 46.15 TOTAL Ninguna 44 67.69 E. coli 19 29.23 Klebsiella spp. 2 3.08 V. DISCUSIÓN El objetivo del presente estudio fue identificar Salmonella spp. en muestras de heces de palomas en la Urbanización Luis Albrecht, Trujillo, no obstante, no se evidenció el crecimiento de tales bacterias. Sin embargo, se identificaron cepas de Escherichia coli con una frecuencia del 29.23% de las muestras analizadas. Este hallazgo es consistente con investigaciones previas, donde E. coli se reporta comúnmente en heces de aves urbanas debido a su presencia habitual en el tracto gastrointestinal de animales de sangre caliente. Aunque muchas cepas son comensales, algunas tienen potencial zoonótico, como las productoras de toxinas Shiga (STEC), lo que subraya la importancia de caracterizar las cepas aisladas en futuros estudios (Abd-Elghany et al., 2015). Por otro lado, Klebsiella spp. se detectó en un 3.08% de las muestras. Esta bacteria, aunque menos frecuente, tiene relevancia clínica debido a su capacidad de causar infecciones oportunistas en humanos, especialmente en poblaciones inmunocomprometidas. La baja frecuencia podría estar relacionada con factores ambientales o biológicos que limitan su proliferación en este entorno específico (Miranda, 2006). Es notable que no se identificaron casos de Salmonella spp., un patógeno de alto interés zoonótico. Este resultado puede deberse a varios factores, como las condiciones ambientales de la zona, la metodología empleada para el aislamiento, o simplemente una baja circulación de este patógeno en la población de palomas estudiada (Araujo, 2018). No obstante, es importante considerar que la ausencia de detección no implica necesariamente su inexistencia, dado que Salmonella spp. puede excretarse de manera intermitente en las aves. La frecuencia total de bacterias identificadas fue del 32.31%, estos datos resaltan el papel de las palomas urbanas como portador de microorganismos que podrían impactar la salud pública, especialmente en áreas urbanas donde estas aves tienen un contacto estrecho con humanos. 15 Con respecto a la salmonelosis se destaca como la principal enfermedad bacteriana transmitida por las palomas domésticas en el ámbito de las zoonosis (Cabello et al., 2007). En comparación a nuestro estudio, Carlos et al. (2016) lograron aislar e identificar Salmonella spp. en un 7.41% (2/27) en heces de palomas, en la ciudad de Lima; por otro lado, Cabello et al. (2007), realizaron una investigación en México, identificando un 4% de esta bacteria. Y, en un estudio en Campina Grande, Brasil, Salmonella spp. fue detectada en porcentajes bajos pero presentes en heces de palomas (Martínez-Martínez, 2003). La ausencia de Salmonella spp. podría deberse a factores ambientales, características específicas de la población de palomas estudiadas, o diferencias en los métodos de cultivo y aislamiento. Con respecto a E. coli, se detectó una frecuencia del 29.23%. Estudios similares realizados en Bolivia y Brasil también identificaron E. coli como un hallazgo común en heces de palomas urbanas, aunque con variaciones en la frecuencia dependiendo de las condiciones ambientales y los métodos de detección utilizados. Por ejemplo, en La Paz, Bolivia, la E. coli fue una de las bacterias más frecuentemente aisladas en un estudio que analizó muestras de palomas en espacios públicos (Miranda, 2006). Por otro lado, Escherichia coli fue la bacteria más comúnmente encontrada en la paloma de Castilla, con una frecuencia del 95% según un estudio en Colombia (Márquez et al., 2015), lo cual supera los hallazgos en palomas de Turquía (45%) y Brasil (50%) (Corrêa y Pelegrine, 2010; Aşkar et al, 2011). Por otro lado, Klebsiella spp. es una bacteria que desempeña un papel importante como causante de muchas enfermedades oportunistas infecciosas; Carlos et al. (2016) encontraron en su investigación un 11.11% frecuencia en heces de aves, una frecuencia menor que la reportada en Brasil, donde se halló en el 40% en el total de las muestras analizadas, siendo la bacteria predominante en ese estudio (Corrêa y Pelegrine, 2010). De igual forma, Hidasi et al. (2013), hallaron un porcentaje del 29.7% de Klebsiella spp. en las heces de 300 loros nativos traficados. Según los autores, esta enterobacteria fue el tercer agente Gram negativo con mayor frecuencia de aislamiento, superada solo por Escherichia coli y Enterobacter sp. Existe, por lo tanto, 16 un riesgo potencial de infección respiratoria para las aves susceptibles, así como la posibilidad de transmisión para las personas que tienen contacto con estas aves. De igual forma, E. coli es la bacteria más comúnmente detectada en las muestras, con una frecuencia que varía entre 15.38% y 46.15% dependiendo de la zona. La zona 5 muestra la mayor frecuencia de E. coli (46.15%), mientras que la zona 4 tiene la menor (23.08%); en total, E. coli fue detectada en el 29.23% de las muestras analizadas. La bacteria Klebsiella spp. fue menos frecuente, con solo un 3.08%. Estos hallazgos resaltan la importancia de implementar medidas de control como la limpieza continua de las áreas comunes, llevando a cabo charlas para concienciar a las personas del peligro que pueden causar las aves en zonas con alta frecuencia de palomas para reducir la posibilidad de transmisión de enterobacterias. VI. CONCLUSIONES ● No se identificaron cepas de Salmonella spp. en el análisis microbiológico de las muestras de heces de palomas analizadas, de la Urbanización Luis Albrecht, Trujillo. ● Se identificaron dos cepas de enterobacterias en el análisis de las muestras de heces de palomas muestreadas, E. coli y Klebsiella spp. VII. RECOMENDACIONES ▪ Mejorar las prácticas de saneamiento y limpieza de la Urb. Luis Albretch. ▪ Se sugiere un estudio con una mayor cantidad de muestras de palomas para la obtención de datos más significativos para la identificación bacteriana. VIII. BIBLIOGRAFÍA Abd-Elghany, S. M., Sallam, K. I., Abd-Elkhalek, A., & Tamura, T. 2015. Occurrence, genetic characterization and antimicrobial resistance of Salmonella isolated from chicken meat and giblets. 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